PENGARUH MEDIA DASAR DAN NAA PADA INDUKSI IN VITRO AKAR TUNAS KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis)

Main Article Content

Karyanti
Mutia Afifah
Tati Sukarnih
Yayan Rudiyana

Abstract

Perbanyakan klonal tanaman kelapa sawit menggunakan teknik kultur jaringan menghasilkan persentase tunas berakar yang rendah. Dalam upaya meningkatkan persentase tunas berakar yang lebih seragam maka dilakukan metode induksi akar yang didukung oleh penggunaan media dasar dan penambahan zat pengatur tumbuh 1-naphthaleneacetic acid (NAA). Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis pengaruh kombinasi media dasar dan konsentrasi NAA yang optimum dalam menginduksi akar tunas kelapa sawit secara in vitro. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial yang terdiri dari 2 faktor. Faktor pertama adalah jenis media dasar yang terdiri dari media Murashige and Skoog (MS) dan MS Modifikasi (MSM). Faktor kedua adalah konsentrasi NAA yang terdiri dari 0; 0,05; 0,1; dan 0,2 ppm. setiap perlakuan diulang sebanyak 10 kali. Hasil penelitian menunjukkan bahwa penggunaan media MSM lebih baik daripada MS, dan konsentrasi NAA yang paling optimum adalah 0,05 dan 0, 1 ppm dalam menginduksi akar kelapa sawit secara in vitro. Selain itu kombinasi perlakuan MSM+NAA 0,1 ppm memiliki hasil yang paling optimum dalam induksi akar kelapa sawit secara in vitro.

Article Details

How to Cite
Karyanti, Mutia Afifah, Tati Sukarnih, & Yayan Rudiyana. (2020). PENGARUH MEDIA DASAR DAN NAA PADA INDUKSI IN VITRO AKAR TUNAS KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis). Jurnal Bioteknologi Dan Biosains Indonesia, 6(2), 229–237. https://doi.org/10.29122/jbbi.v6i2.3476
Section
Articles

References

Arimarsetiowati R, Ardiyani F (2012) Pengaruh penambahan auksin terhadap pertunasan dan perakaran kopi arabika perbanyakan somatik embriogenesis. J Pelita Perkebunan 28:82-90. doi: 10.22302/iccri.jur.pelitaperkebunan.v28i2.201

Arlianti T, Syahid SF, Kristina NN, Rostiana O (2013) Pengaruh auksin IAA, IBA, dan NAA terhadap induksi perakaran tanaman Stevia (Stevia rebaudiana) secara in vitro. Jurnal Buletin Littro. 24:57–62. doi: 10.21082/bullittro.v24n2.2013.%25p

Balzon TA, Luis ZG, Scherwinski-Pereira JE (2013) New approaches to improve the efficiency of somatic embryogenesis in oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) from mature zygotic embryos. In Vitro Cell Dev Biol – Plant 49:41–50. doi: 10.1007/s11627-012-9479-3

Basuchaudhuri P (2016) 1-Naphthaleneacetic acid in rice cultivation. Curr Sci 110:52–56. doi: 10.18520/cs/v110/i1/52-56.

Chuanjun X, Zhiwei R, Ling L, Biyu Z, Junmei H, Wen H, Ou H (2015) The effects of polyphenol oxidase and cycloheximide on the early stage of browning in Phalaenopsis explants. Hortic Plant J 1:172–180. doi: 10.16420/j.issn.2095-9885.2015-0030

Costa JM, Heuvelink E, Van de Pol P (2017) Propagation by cuttings. In Reference module in life sciences Elsevier. doi: 10.1016/B978-0-12-809633-8.05091-3

Foster BP, Sitepu B, Setiawati U, Kelanaputra ES, Nur F, Rusfiandi H, Rahmah S, Ciomas J, Anwar Y, Bahri S, Caligari PDS (2017) Oil palm (Elaeis guineensis). In Genetic improvement of tropical crops pp 241–290. Springer Int Pub. doi: 10.1007/978-3-319-59819-2_8

Gamborg OL, Murashige T, Thorpe TA, Vasil K (1976) Plant tissue culture media. In Vitro 12:473–478. doi: 10.1007/BF02796489

George EF, Hall MA, de Klerk G-J (2008) Plant propagation by tissue culture 3rd Edition. Springer, Dordrecht, The Netherlands

Gomes HT, Bartos PMC, Scherwinski-Pereira JE (2015) Optimizing rooting and survival of oil palm (Elaeis guineensis) plantlets derived from somatic embryos. In Vitro Cell Dev Biol – Plant 51:111–117. doi: 10.1007/s11627-015-9669-x

Hazarika BN (2006) Morpho-physiological disorders in in vitro culture of plants. Sci Hortic 108:105–120. doi:10.1016/j.scienta.2006.01.038

Ibrahim MSD, Hartati RS, Rubiyo, Purwito A, Sudarsono (2013). Direct and indirect somatic embryogenesis on arabica coffee (Coffea arabica). Indones J Agricultural Sci 14:79–86. doi:10.21082/ijas.v14n2.2013.p79-86

Nizam K, Te-chato S (2009) Optimizing of root induction in oil palm plantlets for acclimatization by some potent plant growth regulators (PGRs). J Agric Technol 5:371–383

Nwaoguala CNC, Shittu HO (2018) Effects of growth regulators and type-variety of oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) on direct organogenesis. Not Sci Biol 10:251–258. doi: 10.25835/nsb10210234

Pierik RLM (1997) In vitro culture of higher plants. Springer Science, Dordrecht

Ridhawati A, Dyah Anggraeni TDA,Purwati RD (2017). Pengaruh komposisi media terhadap induksi tunas dan akar lima. genotipe tanaman Agave pada kultur in vitro. Bul Tanam Tembakau, Serat Miny Ind 9:1–9. doi: 10.21082/btsm.v9n1.2017.1-9

Riyadi I, Sumaryono (2010) Pembentukan akar in vitro planlet kelapa sawit (Elaeis guineensis Jacq.) dalam medium cair dengan penambahan auksin. Menara Perkebunan 78:19–24. doi: 10.22302/iribb.jur.mp.v78i1.76

Saad AIM, Elshahed AM (2012). Plant tissue culture media. In Leva A and Rinaldi LMR (Ed.) Recent Advances in Plant In Vitro Culture pp 29–40. IntechOpen, Winchester

Sarmast MK, Salehi H, Khosh-Khui M (2013) Seismomorphogenesis: a novel approach to acclimatization of tissue culture regenerated plants. 3 Biotech 4:599–604. doi: 10.1007/s13205-013-0191-8

Shintiavira H, Soedarjo M, Suryawati S, Winarto B (2012) Studi pengaruh substitusi hara makro dan mikro media MS dengan pupuk majemuk dalam kultur in vitro krisan. J Hort 22:334–341. doi: 10.21082/jhort.v22n4.2012.p334-341

Shirin F, Parihar NS, Shah SN (2015) Effect of nutrient media and KNO3 on in vitro plant regeneration in Saraca asoca (Roxb.) Willd. Amer J Plant Sci 6:3282–3292. doi: 10.4236/ajps.2015.619320

Thawaro S, Te-chato S (2010). Effect of culture medium and genotype on germination of hybrid oil palm zygotic embryos. Sci Asia 36:26–32. doi: 10.2306/scienceasia1513-1874.2010.36.026

Thuzar M, Vanavichit A, Tragoonrung S, Jantasuriyarat C (2011) Efficient and rapid plant regeneration of oil palm zygotic embryos cv. ‘Tenera’ through somatic embryogenesis. Acta Physiol Plant 33:123–128. doi: 10.1007/s11738-010-0526-6

Tolera B (2016) Effects of Naphthalene Acetic Acid (NAA) and Indole-3-Butyric Acid (IBA) on in vitro rooting of sugarcane (Saccharum officinarum L.) micro-shoots. J Biotecnol Biomater 6:215. doi: 10.4172/2155-952X.1000215

Yan YH, Li JL, Zhang XQ, Yang WY, Wan Y, Ma YM, Zhu YQ, Peng Y, Huang LK (2014) Effect of naphthalene acetic acid on adventitious root development and associated physiological changes in stem cutting of Hemarthria compressa. Plos One 9: e90700. doi: 10.1371/journal.pone.0090700

Yunianti (2017) Pengaruh pemberian auksin pada induksi akar secara in vitro dan mikoriza secara ex vitro pada akar bibit tanaman kelapa sawit (Elaeis guineensis Jacq.). Skripsi, Universitas Teknologi Sumbawa

Yunita R, Mariska I, Purnamaningsih R, Lestari EG, Utami S (2016) Induksi akar tunas kelapa sawit (Elaeis guinensis Jacq.) secara in vitro dan ex vitro. J Littri 22:37–42. doi: 10.21082/littri.v22n1.2016.37-42

Yusnita, Hapsoro D (2011) In vitro callus induction and embryogenesis of oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) from leaf explants. Hayati J Biosci 18:61–65. doi: 10.4308/hjb.18.2.61

Zhang K, Wu Y, Hang H (2019) Differential contributions of NO3− /NH4+ to nitrogen use in response to a variable inorganic nitrogen supply in plantlets of two Brassicaceae species in vitro. Plant Methods 15:86. doi: 10.1186/s13007-019-0473-1

Most read articles by the same author(s)

1 2 > >>